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镍柱亲和层析的原理和应用

   日期:2021-01-07     来源:网络    浏览:17901    评论:0    
核心提示:镍柱亲和层析亲和层析的原理 利用分子间存在特异性的相互作用它们之间都能够进行专一而又可逆的结合这种结合力就称为亲和
  
 镍柱亲和层析
亲和层析的原理 利用分子间存在特异性的相互作用它们之间都能够进行专一而
又可逆的结合这种结合力就称为亲和力。
常见具有专一性亲和力的生物分子对
酶 基质类似物抑制剂辅酶
抗体 抗原病毒细胞
细胞 细胞表面特异蛋白外源凝集素
核酸 互补碱基序列组蛋白核酸聚合酶
激素或药物 受体载体蛋白
外源凝集素 多糖糖蛋白细胞表面受体细胞
文献将被固定在色谱基质上的分子称为配体配体和基质是共价结合的构成亲
和层析的固定相称为亲和吸附剂。
配体以共价键结合到活化的基质上构成固相载体 。
一般载体采用琼脂糖凝胶、葡聚糖凝照、聚丙烯酰胺凝胶和纤维素等。

咪唑环是 13 二氮杂戊环英文名是 Imidazole,如果在第一位或第三位上的
氮原子上去掉那个氢原子所剩余的部份就叫咪唑基。就是咪唑上去掉一个和氮
原子直接相连的氢原子后剩下的部分



组氨酸的性质具有弱疏水性、咪唑环为弱电性。
金属离子Cu2+、Ni2+、Zn2+、Co2+等过渡金属离子可与 N、S 和 O 等供电原子
产生配位键因此可与蛋白质表面的组氨酸His的咪唑基、半胱氨酸Cys
的巯基和色氨酸Trp的吲哚基发生亲和结合作用其中以 His 的咪唑基的结
合作用最强。过渡金属离子与咪唑基的结合强弱顺序是 Cu2+Ni2+Zn2+≥
Co2+ 。
镍离子有六个螯合价位通常将镍柱分为了 Ni-NTA 和 Ni-IDA。Ni-NTA 螯合了
四价剩余两价而 Ni-IDA 螯合三价剩余三价。因此 Ni-IDA Agarose 结合作
用力要比 Ni-NTA Agarose 强在同样条件下 Ni-IDA Agarose 的载量要比 Ni-NTA
高而且洗脱杂质和目标蛋白所用的缓冲液中咪唑浓度更高但 Ni-NTA 更稳定
耐受更强的还原剂镍离子更不易脱落。因此需要根据不同的纯化条件选择纯化
所需的镍柱以达到纯化的最佳效果


基质
①不溶性的多孔网状结构渗透性好
②物理和化学稳定性高有较高的机械强度使用寿命长
③抗微生物和酶的侵蚀
④最好为粒径均一的球形粒子
⑤具有亲水性无非特异性吸附
⑥含有可活化的反应基团利于亲和配体的固定化。
例琼脂糖凝胶微球的商品名为 Sepharose含糖浓度为 2%、4%、6%时分别称为
2B、4B、6B。Sepharose 4B 的结构比 6B 疏松而吸附容量比 2B 大所以 4B 应
用最广。
配基是可以可逆结合特定分子或特定基团的分子能够通过亲和色谱的方式进
行纯化。
配基的选择受到两种因素的影响1配基与目标物的结合必须具有特异性
和可逆。
2必须具有化学修饰基团使它吸附在基质上并且不损害它的活性。
间隔臂目标蛋白质的结合位点位于分子中较深的部位如果将配基直接偶联到
基质上受到空间位阻的影响配基不能到达目标蛋白的结合位点因此与目标
蛋白的结合能力低。于是在配基与基质之间插入一个间隔臂可以使结合更加容
易。间隔臂使结合最大化的同时要避免非特异性结合。
间隔臂的长度是关键太短无效; 太长发生非特异性结合。一般规则偶联
的分子量小于 1000 时使用间隔臂当大分子量则不一定要。
二硫键蛋白质的的二硫键在半胱氨酸残基的硫醇之间形成包内蛋白离开细胞后二硫键
常以氧化状态存在。
此键在蛋白质分子的立体结构形成上起着一定的重要作用。为了确定蛋白质的一级结构首
先必须将二硫键打开使成为线状多肽链。
上样方式1直接上样 2间接上样
洗脱方式1pH 值洗脱pH 的改变可以改变带电荷的配基基团和结合蛋白的离子化程
度使它们结合位点的亲和性降低。降低 pH 的方法
2)离子强度洗脱
(3)竞争性洗脱咪唑
再生(1)先用强变性剂 6M 盐酸胍冲洗柱子
(2)用水冲洗干净
(3)0.2%SDS 冲洗柱子
(4)用水冲洗干净
(5)50%乙醇冲洗柱子
(6)用水冲洗干净
(7)用 100mM EDTA(50mM Tris 100mM EDTA PH 8.0)冲洗柱子
(8)用水冲洗干净
(9)用 100mM 硫酸镍孵育柱子
(10)20%乙醇中 4℃保存
上清缓冲液及配方

上清纯化缓冲液 配方
Lysis Buffer
50mM Tris-HCl150mM NaCl20mM ImidazolepH8.0
Elution Buffer 1
50mM Tris-HCl150mM NaCl50mM ImidazolepH8.0
Elution Buffer 2
50mM Tris-HCl150mM NaCl100mM ImidazolepH8.0
Elution Buffer 3
50mM Tris-HCl150mM NaCl300mM ImidazolepH8.0
包涵体缓冲液及配方
包涵体纯化缓冲液
配方
IB Lysis Buffer 1
20mM Tris150mM NaCl2mM EDTA2mMDTT
1% Triton X-100PH8.0
IB Lysis Buffer 2
50mM Tris-HCl150mM NaCl 8Murea pH8.0
IB Elution Buffer1
50mM Tris-HCl 150mMNaCl20mMImidazola 8Murea
pH8.0
IB Elution Buffer2
50mM Tris-HCl 150mMNaCl50mMImidazola 8Murea
pH8.0
IB Elution Buffer3
50mM Tris-HCl 150mMNaCl100mMImidazola 8Murea
pH8.0
IB Elution Buffer4
50mM Tris-HCl 150mMNaCl300mMImidazola8Murea
pH8.0
IB Elution Buffer5
50mM Tris-HCl 150mMNaCl500mMImidazola8Murea
pH8.0

试剂及作用
1.TritonX -100(曲拉通)具亲水端和疏水端可将膜蛋白从细胞膜上解离下来
达到提取膜蛋白的作用。常用的非离子性去垢剂。用量1%-3%TritonX -100。
2.TCEP三(2-羧乙基)膦是一种非常有效的硫醇类还原剂广泛用作蛋白质
化学及蛋白质组学研究中二硫键的定量还原剂。该试剂在水溶液中的稳定性和溶
解性都很好。在酸性、碱性溶液中的稳定性也不错。与其他类别的硫醇类还原剂
如 DTT 相比TCEP 不仅是一种高效的二硫键还原剂而且在某些巯基的交联
反应中不需要除掉。用量1mM/ml.
3.Pepstatin(胃蛋白酶抑制剂)抑制酸性蛋白酶配置时溶于甲醇中在水中不
溶解。用量1ug/ml。Store at:-4℃A week/-20℃Half a year。
4.Leupeptin(亮抑蛋白酶肽)抑制丝氨酸和巯基蛋白酶配置时溶于水用量
1ug/ml。Store at:-4℃A week/-20℃Half a year。
5.EDTA乙二胺四乙酸螯合剂消除微量重金属导致的酶催化反应中的抑
制作用。不影响蛋白质功能的情况下去除干扰金属离子但是同时能使金属蛋白
酶丧失活性。用量0.1—5mmol/L。
6.Glycerol(甘油)增加黏度减少分子间的碰撞用量5%-30%。
7.SDS 十二烷基硫酸钠能够使蛋白质变性的阴离子型去污剂用量0.1%-1%。
8.TritonX -114(曲拉通)温度在 22℃以上时在蛋白质溶液中加入 2%的 TritonX
-114 可使蛋白质从去垢剂相和液相中分离可溶性蛋白在液相中而膜蛋白则进
入了去垢相中。内毒素存在于细胞壁组分菌裂解后释出物中。
9.DTT二硫苏糖醇常常被用于蛋白质中二硫键的还原可用于阻止蛋白质
中的半胱氨酸之间所形成的蛋白质分子内或分子间二硫键。但 DTT 往往无法还
原包埋于蛋白质结构内部溶剂不可及的二硫键这类二硫键的还原常常需要
先将蛋白质变性高温加热或加入变性剂如 6M 盐酸胍、8M 尿素或 1%SDS。
用量1-2mM.
10.L-Arginine(L-精氨酸)增加蛋白质的溶解性阻止蛋白质分子间通过疏水作
用发生凝聚而产生沉淀。用量0.4-0.6mol/L.
 
     
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